Разведение форели: Страница не найдена — LovlyaVsem

Садки для форели монтируются в проточных водоемах на плавучих каркасах, фиксируемых береговыми конструкциями либо с помощью якорей. С берегом и между собой для обслуживания и кормления рыбы садки соединяются мостками. Специальных требований к размеру и форме каркасов, а следовательно, и сетных камер не предъявляется. Садки могут быть круглыми, квадратными либо прямоугольными, рекомендованный объем сетной камеры должен составлять 100 м³. Глубина погружения сетной камеры должна лежать в пределах 5.0 … 6.0 метров, при этом расстояние между ее конической донной частью и дном водоема должно быть не менее 1.0 метра. Для кормления рыбы могут устанавливаться автоматизированные кормушки. Такое решение хотя и требует увеличение первоначальных вложений, но существенно упрощает разведение форели в садках, снижая трудозатраты рыбовода.

Плотность зарыбления садка годовиками должна составлять 200 особей на кубометр садка. Частота кормления рыбы в ходе выращивания форели в садках отличается в зависимости от возраста и может достигать до 12 раз в сутки. Чем младше поголовье, тем чаще кормление. И если сеголетки нуждаются в семиразовом кормлении, то у более взрослых особей на откорме нормой считается 4-хразовое питание. Для кормления форели рекомендовано применение специальных гранулированных кормов, чей сбалансированный состав способствует быстрому набору веса. Для молоди используются корма с преобладанием компонентов животного происхождения (костная мука и пр.). Более взрослое поголовье нуждается в кормах с доминированием растительных составляющих, способствующих росту мышечной массы. Правильный подход и тщательно спланированный бизнес позволит освоить высокодоходный бизнес по разведению форели в садках. 

Приобрести сетные камеры по привлекательным ценам для организации садкового хозяйства можно у производителя – компании «ИЦТМ-ПЕТРОКАНАТ». Опыт наших специалистов поможет правильно подобрать садок с необходимыми размерами сетки, к примеру, для особей весом от 100 граммов подходит сетка с ячейкой 10.0 … 14.0 мм.

Ручьевая форель

Интересные факты

Максимальный зарегистрированный вес ручьей форели составляет 8 кг (17 фунтов 10 унций). Максимальный зарегистрированный возраст ручьей форели составляет 24 года. Ручьевая форель может скрещиваться с коричневой форелью, давая неплодородную тигровую форель. В озере Верхнем большая ручейная форель осенью мигрирует в ручьи для нереста. Этот тип стратегии жизненного цикла называется адфлювиальным.

РАЗМЕР: Обычная длина ручейковой форели составляет 24,6 см (10,4 дюйма) с максимальной зарегистрированной длиной. 86 см (33,9 дюйма) .

ДИАПАЗОН: Ручьевая форель произрастает в восточной Канаде и на северо-востоке США. Их ареал простирается на запад до восточной части Миннесоты. Первоначальный ареал ручьей форели также включает Аппалачи, где она до сих пор встречается во многих высокогорных ручьях на юге, например, в Джорджии.

МЕСТО ОБИТАНИЯ: Ручейная форель встречается в чистых, прохладных, хорошо насыщенных кислородом ручьях, малых и средних реках и в озерах. В пределах своего естественного ареала наблюдались общие движения ручейковой форели вверх по течению ранней весной, летом и поздней осенью. Было замечено, что ручьевая форель движется вниз по течению поздней весной и ранней осенью. Некоторые ручьи форели, более известные как солончаки, весной спускаются к морю, когда температура в ручьях повышается, но никогда не отваживаются заходить дальше нескольких километров от устьев рек.Эти солтеры могут оставаться в море до трех месяцев.

ПИТАНИЕ: Молодые ручьи форели питаются планктоном и превращаются в насекомых, пока не станут взрослыми. Ручьевая форель питается множеством организмов, включая червей, пиявок, ракообразных, насекомых, моллюсков, рыб, земноводных, а также мелких млекопитающих. В желудках речной форели обнаружены следы растительных остатков.

Естественная история

Ручьевая форель относится к семейству гольцовых.Ручьевая форель предпочитает небольшие ручьи, подпитываемые весной, и пруды с песчаным или гравийным дном и растительностью. Этот вид предпочитает нереститься по гравию в ручьях или озерах, с просачиванием грунтовых вод или в озерах, питаемых источниками.

Преднерестовое ухаживание за ручейной форелью начинается с того, что самец пытается подтолкнуть самку к подходящей гравийной среде обитания для облегчения нереста. Восприимчивая самка выбирает место и выкапывает красноту. Пока самка ручейковой форели копает, самец ручейковой форели продолжает ухаживать за ней, прыгая рядом с самкой и дрожа, плавая над ней и под ней и растирая самку плавниками.Во время этого процесса самец тратит много времени, отгоняя других самцов. После нереста самка ручейковой форели укрывает икру, подметая мелкую гальку на нижнем крае красной реки вверх по течению. После того, как яйца покрыты, самка движется вверх по течению к концу красной корки, а затем начинает рыть новую рыбу.

Ручьевая форель обычно созревает через два года, но может нереститься через год. Эти рыбы нерестятся с сентября по октябрь.Мальки ручейковой форели появляются в период с февраля по апрель. Молодые ручьи форели обычно ищут убежища в затопленной водной растительности или на мелководье вблизи береговой линии.

Сохранение

Ручьевая форель — объект крупномасштабного партнерства по восстановлению, известного как совместное предприятие Eastern Brook Trout Joint Venture. Численность ручейковой форели на всем ее естественном ареале на верхнем Среднем Западе и северо-востоке сократилась из-за потери среды обитания в холодной воде, в основном из-за землепользования.

Интродуцированные форель и лосось соревнуются за нерест и место выращивания с ручьей форелью.

Миграционное поведение

Ручейная форель — перелетный вид. Некоторые из этих рыб проводят всю свою жизнь в пресной воде, а другие, называемые солитерами, рождаются в пресной воде, а затем мигрируют в океан для своей взрослой жизни и возвращаются в пресную воду для размножения.

Общегеномные оценки генетического разнообразия, инбридинга и эффективного размера экспериментальных и коммерческих линий радужной форели, подвергающихся селективному разведению | Genetics Selection Evolution

Форель Северной Америки: полное руководство

Северная Америка — рай для ловли форели. От отдаленных горных ручьев до больших стремительных рек — водные пути США и Канады идеально подходят для многих различных видов форели. На самом деле их так много, что это может сбить с толку. Разные форели Северной Америки похожи друг на друга и часто живут в одном и том же месте, так как же узнать, что ловишь?

Это руководство даст вам несколько простых советов по изучению вашей форели.Узнайте, что живет, где и как отличить это от всего остального. Узнайте немного о том, как разные семейства форелевых подходят друг другу. Вы можете быть удивлены, обнаружив, что ваша любимая рыба — вовсе не форель!

Туземцы: тихоокеанская форель

Эти парни — бесспорные короли ловли форели в Северной Америке. Их приятно поесть, даже лучше поймать, и в придачу к ним есть настоящая звездная привлекательность. В Северной Америке есть только два вида тихоокеанской форели, но каждая рыба сильно различается в зависимости от того, где вы ее поймаете.

Радужная форель

Радужная форель, вероятно, самый известный вид в Северной Америке. Они получили свое название от фирменной розовой полосы, которая проходит вдоль их бока, но это не единственный способ их узнать. Черные пятна на теле и спинном плавнике, а также широкий квадратный хвост — тоже подарки.

Радужная форель обитает на побережье Тихого океана, от Аляски до Мексики. Однако они были введены далеко за пределы этого родного диапазона. Радужную форель можно встретить на большей части юга Канады, во всех Великих озерах и даже на юге, в Джорджии и Алабаме.Они также есть на складе по всему миру.

Есть несколько разных видов радужной форели. Steelhead — это те, которые в первую очередь приходят в голову большинству людей. Эти ребята могут выглядеть совершенно по-разному, но на самом деле они всего лишь проходная (бегущая по морю) форма радужной форели. Другими основными подвидами являются Golden Trout и Redband Trout, которые встречаются только в определенных реках Среднего Запада и Тихоокеанских штатов США, хотя их зарыбление ведется за пределами этого ареала.

Форель-головорез

Cutthroat Trout, возможно, и не такие заголовки, как их более крупные радужные кузены, но они получили гораздо более прохладное имя.Достаточно взглянуть на них, чтобы понять почему. Ярко-красный цвет позади нижней челюсти заставляет Головореза Форель выглядеть так, будто у них постоянно идет кровь. Если вы хотите быть уверены вдвойне, у них должны быть небольшие черные пятна, в основном на верхней половине тела.

Большинство форелей-головорезов обитают в западной части США, от Тихоокеанского побережья до Скалистых гор. Они также живут на юго-западе Канады, а океаническая форель-головорез может появляться на севере, вплоть до Аляски. Помимо естественного ареала, головорезы были завезены в некоторые части Квебека и на северо-востоке США.

Форель-головорез — самый разнообразный из всех видов североамериканской форели. Сегодня существует 11 различных подвидов. Каждый подвид выглядит немного по-своему и живет в определенной реке или водосливе. Фактически, во многих национальных парках есть свои виды головорезов.

Форель Гила и Апач

Рыболовы могут прожить всю жизнь, не видя ни одной из этих рыб. Если вы не из Аризоны или Нью-Мексико, возможно, вы никогда о них не слышали.Форель хила обитает только в притоках реки Хила, в основном в Национальном лесу Хила и в национальном заповеднике Альдо. Форель апачей встречается еще реже, ограничивается верховьями Литл-Колорадо и Солт-Ривер, а также несколькими озерами, куда они были завезены совсем недавно.

Даже в пределах их родного ареала Гилас и Апачи редки. Чрезмерный вылов рыбы, потеря среды обитания и попадание радужной форели в их воды привели к сокращению их численности в первой половине 20 века. Оба вида были одними из первых в США, кто официально оказался под угрозой исчезновения, и МСОП по-прежнему классифицирует форель апачей как находящуюся под угрозой исчезновения — в одном шаге от исчезновения.

Гила и Апачская форель — редкие красавицы. В среднем они имеют длину чуть менее 30 см, имеют золотисто-желтые тела и темные пятна по бокам. Самый простой способ отличить их — это то, что у Apache Trout есть пятна по обе стороны от зрачка, что придает им вид повернутого кошачьего глаза. У гилы также, как правило, пятна меньшего размера, чем у апачей.

Захватчики: Европейская форель

Ни для кого не секрет, что большая часть популярной рыбы поступает из-за границы.Павлиний окунь — бразильский, а чавычи не должны быть в Великих озерах. Люди вылавливают форель по всему миру, в том числе один вид, который набирает силу в Северной Америке.

Форель

Несмотря на свое название, форель не всегда коричневого цвета. Они могут быть золотыми или серебряными, в зависимости от того, где они живут. Какого бы цвета ни был, их легко распознать. У кумжи есть красно-оранжевые пятна с серебряными кольцами вокруг них. Они также больше похожи на лососевых, чем у большинства других видов.Для этого есть веская причина: на самом деле они более близки к атлантическому лососю, чем к другой форели.

Форель была завезена в Северную Америку из Германии. Они очень хорошо прижились в своем новом доме, и в наши дни их можно поймать от Онтарио до Джорджии и по всем Великим озерам. Они также живут по всей западной половине Америки, от Калифорнии до Колорадо, и вплоть до Альберты и Британской Колумбии.

У форели в Европе есть несколько подвидов, которые иногда вызывают путаницу.Проходную форель называют «морской форелью», а речную и озерную рыбу часто называют «речной форелью» или «озерной форелью». Однако они не имеют ничего общего с озерной форелью в Северной Америке.

Совершенно непонятно: Char

Здесь все начинает усложняться. В Северной Америке есть несколько видов «форели», которые на самом деле не являются форелью — это чар, северный родственник форели и лосося. Все Чарли очень похожи друг на друга. Настолько, что люди веками думали, что все они были одним видом.

Озёрная форель

Озёрная форель — старший брат семьи Чар. Эта большая холодноводная рыба может вырасти до более 80 фунтов. Их размер на самом деле самый простой способ распознать их, но у них также есть кремовые пятна и гораздо более глубоко раздвоенный хвост, чем у других видов.

Озерная форель является родиной большей части Аляски и Канады, а также Великих озер и северо-востока США. С годами они распространились за пределы этого ареала и теперь появляются вдоль Скалистых гор и время от времени в озерах по всей территории США.

Озёрная форель не так разнообразна, как разновидности тихоокеанской форели, но они компенсируют это своей широкой коллекцией прозвищ. В зависимости от того, где вы их ловите, они могут называться Макино, Намайкуш, Серая форель, Тулади или Тогу.

Ручьевая форель

Наша следующая «форель, но не форель» — это ручейная форель. Эти парни намного меньше других видов гольцов. В среднем они составляют около 1–2 фунтов и редко достигают двузначных чисел. Помимо размера, проще всего их отличить по червеобразным отметинам на спине и голове, а также по белым краям на нижних плавниках.

Ручьи форели произрастают на востоке Северной Америки. Они живут во всех Великих озерах, к югу от Аппалачских гор и к северу от Северного Ледовитого моря. Сегодня вы можете найти ручейную форель в любом месте, где достаточно холодно — в горных ручьях в Скалистых горах и южных провинциях Канады.

Ручьевая форель также была завезена по всему миру. Они побывали в Австралии, Новой Зеландии, Аргентине и Европе — думайте о них как о приятелях по обмену для всей коричневой форели, прибывающей в Америку.

Долли Варден Форель

Долли-вардены — один из самых северных видов североамериканской форели. Опять же, технически это голец, а не форель. Фактически, только недавно люди осознали, что они отличаются от арктического голца. Это вид гольца, который долгое время оставался незамеченным, а затем получил название «форель». Потрясающий.

Долли Варден Форель обитает на всем северо-западе, от арктических просторов Аляски до северной половины Вашингтона.За пределами Северной Америки они пересекли море, а также населяют реки Сибири и Японии. Все Долли Варден по своей природе анадромны, и немногочисленные популяции, не имеющие выхода к морю, являются скорее исключением, чем правилом.

Как вы понимаете, Долли Варден очень похожа на других рыб в их ареале. Лучше всего остановиться на размере — Долли редко превышают 10 фунтов. У них тоже нет червеобразных следов ручейной форели, а их хвосты менее раздвоены, чем у озерной форели.Кроме этого, с первого взгляда особо нечего сказать. Иногда приходится анализировать ДНК, чтобы определить, какую рыбу вы держите.

Бычья форель

Бычья форель — одна из самых редких лососевых в Северной Америке. Они живут только в больших холодных реках и дренажах на Тихоокеанском северо-западе. Вы вряд ли увидите бычью форель, если не начнете ее искать. Если вы хотите его найти, лучше всего отправиться в Вашингтон, Орегон, Британскую Колумбию и Альберту.

Бычья форель по внешнему виду почти идентична долли вардену и арктическому голу.Фактически, они были известны как «Долли Варден» до конца 70-х годов. Самый простой способ узнать, что у вас есть бычья форель, — это ее ограниченное распространение и больший размер: если она весит 12 фунтов или больше и у нее нет суперразветвленного хвоста, это, вероятно, бычья форель. Если меньше, все идет.

Кроссоверы: гибридная форель

Помимо естественных видов форели, есть пара гибридов, которые вы можете найти в конце вашей лески. Шансы поймать одного в дикой природе невелики, но всегда лучше знать о них, на всякий случай.

Тигровая форель

Тигровая форель получена от скрещивания самца ручейной форели с самкой кумжи. Они не очень похожи ни на родителей, ни на любую другую рыбу в этом отношении. У них есть драматический рисунок, похожий на червя, на большей части их тела. Кроме того, они более толстые, чем большинство видов форели, и любят бросать свой вес, что делает их фаворитом многих спортивных рыболовов.

Тигровая форель редко встречается в дикой природе. Вы можете найти их в Висконсине и Мичигане, но лучше всего поймать их на зарыбленном озере.Где бы вы ни встретили их, вы вряд ли забудете их!

Splake

Splake — помесь самца ручейной форели и самки озерной форели. Они начинают есть другую рыбу намного раньше, чем естественные виды форели, и в результате растут гораздо быстрее. Из-за этого они получили зловещее прозвище «Форель Вендиго» в честь прожорливого зверя из алгонкинского фольклора. Они похожи на ручейную форель, но с раздвоенным хвостом озерной форели.

Splake теоретически может воспроизводиться в дикой природе.Однако это происходило всего несколько раз, и подавляющее большинство сплэйков разводятся и разводятся намеренно. Самая крупная программа разведения проводится в Онтарио, где правительство разводит их в заливе Джорджиан и в нескольких небольших озерах как быстрорастущих спортивных рыб.

Подводя итоги: форель Северной Америки

Мы не вдавались в подробности определения каждого вида, потому что он может сильно различаться в зависимости от того, когда и где вы их поймаете. Даже тогда некоторые виды настолько похожи, что несколько десятилетий назад даже не считались разными.Вот краткое изложение того, что мы здесь рассмотрели.

Всего в Северной Америке насчитывается 11 видов форели:

• Две тихоокеанские форели: Головорез и радужная форель.
• Одна европейская форель: Коричневая форель.
• Четыре символа: Ручей, Бык, Долли Варден и Озёрная Форель.
• Два известных гибрида: Splake и Tiger Trout.

Головорез и радужная форель — самые разнообразные виды форели.Их также легче всего распознать по разноцветным шортам и полосам.

Коричневая форель не имеет близкого родства с какой-либо другой форелью. По форме он похож на атлантического лосося и имеет красные пятна с серебряными кольцами. Не всегда коричневый.

Ручей, Булл, Долли Варден и Лейк-Форель живут дальше на север, и все они очень похожи. Озеро Форель самые большие. Ручьи форели обычно самые маленькие и имеют необычные отметины.

Splake и Tiger Trout действительно существуют только в специально созданных популяциях, хотя они могут появляться в дикой природе.Они более агрессивны, чем большинство видов форели.

Помогло ли это вам понять различные виды форели в Северной Америке? Каков ваш способ отличить их друг от друга? Дайте нам знать в комментариях ниже. В противном случае найдите местного гида и начните их ловить!

Мелкомасштабное форелеводство: домашние рыбоводные хозяйства

Домашние рыбные фермы могут быть прибыльными и устойчивыми, учитывая тот факт, что вы можете выращивать собственную рыбу без использования каких-либо антибиотиков, химикатов или синтетических продуктов.Если вы выращиваете рыбу в закрытом контейнере или бассейне, ваша рыба безопаснее от микробов или естественных хищников, и ее можно контролировать на предмет паразитов, инфекций и болезней.

Выращивание собственной рыбы в собственном пруду также имеет большое преимущество в связи с окружающей средой. Ваш пруд на заднем дворе или садовый пруд может стать центром притяжения для вашего дома, где вы и ваша семья могли бы собраться вокруг, приготовить еду или просто насладиться расслабляющим вечером у своего пруда, чувствуя спокойствие, которое вы можете получить только с помощью тела воды, пока вы наблюдаете, как плавают рыбы.

Вы можете легко выращивать рыбу в пруду на заднем дворе круглый год, если знаете, какой вид рыбы лучше всего подходит для вашего района. Вам также необходимо решить, какой размер пруда вы хотите иметь, что зависит от размера вашего двора, типа рыбы и количества рыб, которые вы хотите выращивать.

Форель может быть хорошей рыбой для разведения в пруду на заднем дворе, если вы хотите выращивать ее в коммерческих целях. Из форели можно легко приготовить здоровый обед для вашей семьи, или вы можете выгодно продать ее в местные продуктовые магазины или на фермерские рынки, чтобы получать стабильный доход круглый год.

Домашняя радужная форель

Большая часть радужной форели, доступной сегодня на рынке, выращивается на коммерческих фермах. С 1900 года аквакультура и рыбоводство признано жизнеспособным методом ведения сельского хозяйства на небольших домашних фермах. С начала выращивания форели произошло несколько успехов в выращивании, выращивании и выращивании форели в коммерческих форелевых хозяйствах. По вкусу и консистенции выращенная рыба похожа на выловленную в дикой природе. Кроме того, рыбные хозяйства и инкубаторы аквакультуры смогли сохранить запасы диких рыб и помочь предотвратить превращение форели в редкий или исчезающий вид; многие виды рыб оказались на грани исчезновения в результате чрезмерного вылова рыбы.

Форель — холодноводная рыба и быстро растет, если о ней позаботиться. Они также очень устойчивы. На стадии жарки они предпочитают, чтобы температура была между 32-80 градусами, а позже они могут выжить при минимальной температуре 41 градус. Форель — пресноводная рыба и нуждается в постоянном снабжении пресной циркулирующей водой; Для разведения форели предпочтительным является поток пресной воды высокого качества. Также необходимо регулярно и безопасно удалять отходы и очищать воду, иначе может возникнуть риск роста бактерий и грибков.

Кормление форели

Вам нужно кормить форель в контейнерах, аквариумах, аквариумах или прудах на заднем дворе, потому что в рыбоводных системах аквакультуры не хватает естественных запасов корма. Кормление форели может оказаться сложной задачей, когда вы только начинаете. Трудно понять, сколько это слишком много, а сколько недостаточно. Плавучий корм — лучший корм для вашей форели. Как недокорм, так и перекорм могут быть опасны для рыб (Источник: Кормление форели | www.troutintheclassroom.org ), поэтому важно кормить рыб в необходимом количестве, в зависимости от того, сколько у вас рыбы и насколько велик ваш водоем. Наблюдение за тем, как они реагируют на кормление, многое расскажет об их состоянии здоровья. Кроме того, избегайте чрезмерного кормления их, потому что добавление слишком большого количества пищи в систему может ухудшить качество воды и вызвать появление бактерий, проблем с водными водорослями, такими как водоросли, нитчатые водоросли и рост других подводных водных растений; почти все водные растения и сорняки в вашем аквариуме нежелательны.

Построить систему аквапонического сада на заднем дворе

Садовую систему Aquaponic без почвы можно использовать для выращивания рыб и растений одновременно. При выращивании рыбы в системе аквапоники производятся биоэлементы или вода, богатая аммиаком, которая является идеальным источником органической пищи для растений, выращиваемых в беспочвенной среде. Когда аквапоническое органическое выращивание овощей проводится в сочетании с вашей системой аквапонического рыбоводства, ваша семья может круглый год получать лучший дегустационный запас органической рыбы и овощей.

П.С. : — Для получения более подробной информации о рыбоводстве и поставках, пожалуйста, свяжитесь с нами или оставьте сообщение в поле для комментариев ниже.

Источник: Мировая аквакультура

Репродукция радужной форели | Басовая рыбалка Gurus

Радужная форель темнеет во время нереста и становится более светлой после нереста

Радужная форель достигает половой зрелости раньше, чем большинство других форелей, в том числе гольцов с так называемым форелевым названием.

Нерест обычно происходит ближе к концу первого года жизни. Радуга будет от 30 до 40 см в длину.

Поздней зимой и ранней весной рыбу можно встретить мигрирующими вверх по течению на нерест в мелких гравийных перекатах или лужах. Эти реки и ручьи обычно имеют горное течение, прозрачные, с очень низкой мутностью и умеренным водным потоком.

Самка радужной форели выбирает место нереста и начинает расчищать гнездо, также известное как рыжик.Она делает это, поворачиваясь на бок и взмахивая хвостом по земле, пока не будет унесено достаточно гравия. Гнездо не очень глубокое.

Когда гнездо готово, самец приближается, чтобы ухаживать за ней, хвастаясь, тряся своим телом. Если она принимает его аванс, она переходит в гнездо и откладывает яйца глубоко в гнездо. В зависимости от возраста самки или того, когда она в последний раз откладывала яйца, она откладывает от 400 до 8000 яиц.Затем самец оплодотворяет яйца.

После нереста самка перемещает гравий на верхнем краю обратно, покрывая яйца, обеспечивая им защиту от течения.

Яйца радужной форели выводятся от 3 недель до 4 месяцев в зависимости от температуры воды. Миграция начинается, когда реки нагреваются до температуры от 44 ° F до 50 ° F / от 7 ° C до 10 ° C, что не соответствует их идеальному температурному диапазону от 55 ° F до 60 ° F / от 12,7 ° C до 15.7 ° С.

Маленькая форель затем собирается в группы и укрывается вдоль берегов ручья или на защищенном берегу озера, питаясь ракообразными, растительным материалом, водными насекомыми и их личинками. Молодь форель питается в основном беспозвоночными, в том числе насекомыми.

Затем радуги остаются в аналогичной среде обитания в течение первых 2 или 3 лет, прежде чем перейти в более крупные воды озер и ручьев. Именно тогда они переходят на более рыбный рацион, состоящий из туши лосося, яиц и даже мелких млекопитающих.

В отличие от тихоокеанского лосося, радужная форель не меняет цвет на ярко-красный во время нереста. Однако они не остались без изменений, так как они темнеют во время нереста и снова меняют цвет после нереста на более светлый цвет.

Последствия для воспроизводства, состава жирных кислот и выживаемости потомства

Abstract

Ресурсы наземных растений все чаще используются в качестве заменителей рыбной муки и рыбьего жира в кормах для рыб, чтобы уменьшить зависимость аквакультуры от морских рыбных ресурсов.Несмотря на то, что было проведено множество исследований для оценки последствий такого перехода в питании, до настоящего времени не сообщалось о полных циклах размножения рыб, питаемых рационами без морских ресурсов. Поэтому мы изучили репродуктивную способность форели после полного цикла разведения при потреблении диеты, полностью лишенной морских ингредиентов и, следовательно, длинноцепочечных полиненасыщенных жирных кислот n-3 (n-3 LC-PUFA), которые играют важную роль в формировании яйцеклеток. Две группы самок радужной форели получали либо коммерческий рацион (C, морские и растительные ингредиенты), либо 100% растительный рацион (V, смесь растительных белков и растительных масел).Во время нереста брали пробы из печени, внутренних органов, туш и яйцеклеток и анализировали их на липиды и жирные кислоты. Хотя V-диета не содержала n-3 LC-PUFA, значительные количества EPA и DHA были обнаружены в печени и яйцах, демонстрируя эффективное биоконверсию линоленовой кислоты и избирательную ориентацию в отношении яйцеклеток. Некоторые яйцеклетки были оплодотворены для оценки репродуктивной способности и выживаемости потомства. Мы впервые наблюдали, что форель, получавшая 100% растительную диету в течение 3-летнего цикла размножения, могла давать яйцеклетки и жизнеспособные олени, хотя яйцеклетки были меньше.Выживаемость потомства от самок с V-образным вскармливанием была ниже (-22%) при первом нересте, но не при втором. Наше исследование показало, что радужная форель, выращенная полностью на такой диете, не только может расти на растительной диете, но и может успешно производить яйцеклетки, в которых накапливаются неосинтезированные n-3 LC-PUFA, что приводит к жизнеспособному потомству. Тем не менее, дальнейшая корректировка формулы кормления все еще необходима для оптимизации репродуктивных показателей.

Образец цитирования: Lazzarotto V, Corraze G, Leprevost A, Quillet E, Dupont-Nivet M, Médale F (2015) Трехлетний цикл разведения радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ) Кормление растительной диетой, полностью бесплатно морских ресурсов: последствия для воспроизводства, жирнокислотного состава и выживаемости потомства.PLoS ONE 10 (2): e0117609. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0117609

Академический редактор: Хосе Луис Бальказар, Каталонский институт исследований водных ресурсов (ICRA), ИСПАНИЯ

Поступила: 26 сентября 2014 г .; Одобрена: 29 декабря 2014 г .; Опубликовано: 6 февраля 2015 г.

Авторские права: © 2015 Lazzarotto et al. Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника

Доступность данных: Все соответствующие данные находятся в пределах бумага.

Финансирование: Эта работа была поддержана европейским проектом FP7 ARRAINA (№ 288925) и проектом FUI VegeAqua. Финансирующие организации не играли никакой роли в дизайне исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

Конкурирующие интересы: Авторы заявили, что конкурирующих интересов не существует.

Введение

Аквакультура в настоящее время является наиболее быстрорастущим сектором животноводства и непрерывно расширяется в течение последних 25 лет, чтобы удовлетворить растущий спрос на рыбу как пищу, которую рыболовство не может удовлетворить.Аквакультура в настоящее время составляет 40% от общего объема производства рыбы для потребления человеком и, как ожидается, к 2020 году достигнет 60% [1,2]. Это предполагает рост аквакультуры, который не может быть достигнут при использовании рыбной муки (FM) и рыбьего жира (FO) в качестве основных источников питания. Их использование в рыбоводстве более чем когда-либо ограничено из-за их сокращающейся доступности и высокой стоимости. Хищные виды рыб, такие как лососевые, остаются одними из самых крупных потребителей рыбьего жира (51% доли рынка) и третьим по величине потребителем рыбной муки (19.5% доли рынка) [3]. Среди лососевых разведение радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ) представляет собой основное производство пресной воды в Европе [3], и интенсивные исследовательские усилия сосредоточены на замене морских кормов (FM и FO) более доступными растительными ингредиентами [4] в их диетах.

Замена FM альтернативными продуктами наземного растений изучается более двадцати лет [4–6]. Хотя может быть достигнуто существенное снижение уровней FM в рационе, еще предстоит преодолеть несколько трудностей в отношении полной замены FM растительными ингредиентами, даже у лососевых.Некоторые предыдущие исследования показали, что полная замена FM растительными источниками белка приводит к снижению показателей роста радужной форели [5], что, возможно, связано с уменьшением потребления корма [7]. Более того, плохая усвояемость углеводов [8], которых много в растительных диетах, и наличие факторов, препятствующих питанию [9], также могут быть причиной плохих показателей роста. Что касается FO, несколько исследований, проведенных на лососевых (радужная форель, кумжа — Salmo trutta -, атлантический лосось — Salmo salar ), показали, что можно полностью заменить FO отдельными растительными маслами или их смесями, без влияния на рост или эффективность корма [10,11], при условии, что потребности в n-3 LC-PUFA удовлетворяются за счет липидов, содержащихся в рыбной муке.Основной проблемой при замене как FM, так и FO растительными источниками является отсутствие длинноцепочечных n-3 полиненасыщенных жирных кислот (n-3 LC-PUFA), таких как эйкозапентаеновая кислота (EPA) и докозагексаеновая кислота (DHA). Эти жирные кислоты (ЖК) важны в жизненном цикле рыб, в первую очередь из-за их роли в качестве мяса [12] и воспроизводстве, качестве яиц и развитии потомства [13,14]. Как у лососевых, так и у многих культивируемых рыб половое созревание и развитие гонад происходит за счет накопленной энергии, включая липиды [15].Предыдущие исследования на радужной форели показали, что во время полового созревания липиды первоначально мобилизуются из висцеральной жировой ткани [16], а мобилизация из вторичных участков накопления (например, мышц) происходит только в долгосрочной перспективе [17]. Более того, висцеральная жировая ткань, по-видимому, является основным источником энергии для вителлогенеза [18], решающего этапа женского репродуктивного цикла. После мобилизации жирных кислот жировой ткани этот процесс обеспечивает последующий синтез в печени и экспорт липопротеинов (вителлогенин), которые вместе с липидами и витаминами в конечном итоге поглощаются яйцеклетками посредством эндоцитоза, обеспечивая энергетические резервы для развития яйцеклеток и потомства.Во время этого процесса n-3 LC-PUFA, такие как EPA и DHA, предпочтительно включаются в яйцеклетки, обычно в соотношении 2: 1 [19]. EPA и DHA, а также n-6 PUFA арахидоновая кислота (ARA) признаны определяющими факторами качества яиц нескольких видов [13, 20–25] и развития потомства [26]. Помимо удовлетворения энергетических потребностей в раннем онтогенезе, одна из специфических ролей n-3 LC-PUFA, в частности DHA, заключается в включении в формирование мембран и поддержании их текучести [27].Лососевые, которых кормят диетой, не содержащей n-3 LC-PUFA, способны биосинтезировать DHA за счет десатурации и удлинения линоленовой кислоты (доступной в растительных ингредиентах, таких как льняное масло) [17]. Однако также было продемонстрировано, что такой биоконверсии недостаточно для компенсации недостатка в рационе n-3 LC-PUFA, что приводит к значительному снижению этих ЖК в тканях рыб [28]. В то время как в нескольких исследованиях изучалось влияние растительной диеты на рост, метаболизм и качество мяса рыбы, последствия использования растительной диеты без FM и FO на протяжении всего жизненного цикла для репродуктивной способности и выживаемости потомства не повлияли. изучены на сегодняшний день.Это представляет собой значительный пробел в знаниях, поскольку успешное воспроизводство, качество яиц и развитие потомства являются ключевыми элементами в рыбоводстве [29].

Мы исследовали, способна ли радужная форель, выращенная на растительной диете от первого кормления до воспроизводства, синтезировать достаточное количество n-6 и n-3 LC-PUFA из предшественников для выживания и воспроизводства. Кроме того, в дополнение к репродуктивным характеристикам также были изучены включение n-3 и n-6 ПНЖК в яйцеклетки и последующее межпоколенческое влияние на выживаемость потомства, чтобы оценить, может ли самка форели, выращенная исключительно на растительной диете, производят жизнеспособные яйцеклетки и потомство.

Материалы и методы

Этика

Эксперимент проводился в строгом соответствии с нормативно-правовой базой ЕС, касающейся защиты животных, используемых в научных целях (Директива 2010/63 / EU), и руководящими принципами французского законодательства, регулирующего этическое обращение с животными (Постановление № 2001-464. , 29 мая 2001 г.). Он был одобрен этическим комитетом INRA (INRA 2002-36, 14 апреля 2002 г.). Экспериментальный центр INRA сертифицирован для обслуживания животных под номером разрешения B29-277-02 французской ветеринарной службой, которая является компетентным органом, а ученый, отвечающий за эксперименты, получил обучение и личное разрешение (N ° B64 10 003).Во время эксперимента ежедневно проверяли отсутствие или случайное присутствие мертвых (непрозрачных, беловатых) или неоплодотворенных (прозрачных) яиц, а также форму и размер яиц. Мертвые, неоплодотворенные яйца или икра неправильной формы / размера были осторожно удалены пипеткой компетентным лицом, ответственным за выращивание рыбы в эксперименте. Так же, как и за икрой, во время исследования ежедневно контролировали рыбу. Если наблюдались какие-либо клинические симптомы (например, морфологические отклонения, беспокойство или нескоординированные движения), рыбу усыпляли погружением в 2% раствор бензокаина, а затем усыпляли погружением в 6% раствор бензокаина (передозировка анестетика) на 3 минуты, чтобы убедиться, что смерть была достигнута.

Диеты

Эксперимент проводился с двумя разными диетами: коммерческая (C) диета от « Le Gouessant» (Lamballe, Франция), содержащая смесь FM, FO и растительных ингредиентов, и экспериментальная диета на основе растений (V), полностью свободен от FM и FO, которые были заменены смесью растительных ингредиентов. Последняя диета была разработана UR NuMeA (INRA, Сен-Пе-сюр-Нивель, Франция) и изготовлена ​​на экспериментальных установках INRA (Донзак, Франция). Ингредиенты и состав рационов представлены в таблице 1.В С-диете 45% FM и 50% FO были заменены растительными ингредиентами. Во время испытания кормления производитель коммерческого рациона ( Le Gouessant ) изменил происхождение ингредиентов (в основном FO), так что рыба группы C получила рационы (C ₁ и C ₂ ) с незначительным различный состав ЖК за три года размножения. V-диета содержала только источники растительного белка и смесь растительных масел (50% рапсового масла, 30% льняного масла, 20% пальмового масла). Эта смесь была выбрана для того, чтобы обеспечить общее количество классов ЖК, близкое к пропорциям классов ЖК, обнаруженных в рыбьем жире.Полиненасыщенные жирные кислоты с длинной цепью n-6 или n-3 (LC-PUFA), такие как эйкозапентаеновая кислота (EPA), докозагексаеновая кислота (EPA) или арахидоновая кислота (ARA), не присутствовали в рационе V, тогда как он содержал высокие уровни 18: 3 n-3 (альфа-линоленовая кислота, ALA) и 18: 2 n-6 (линолевая кислота, LA) по сравнению с диетой C. Состав жирных кислот двух диет приведен в таблице 2.

Рыба и опытный образец

Самки радужной форели были выращены на рыбном хозяйстве INRA (PEIMA, Sizun, Франция).На протяжении всего эксперимента рыб выращивали в естественных фотопериодических и температурных условиях. Рыбы были случайным образом разделены на две группы, которые выращивались либо на коммерческой диете (C), либо на растительной диете без FM / FO (V). Диетическое лечение применялось от первого кормления до конца испытания. Самок из группы V-диеты кормили два раза в день до очевидного насыщения. Чтобы избежать значительных различий в массе тела во время анализа, рацион питания C-группы был скорректирован до рациона V-группы, поскольку известно, что кормление радужной форели растительным рационом без морских ресурсов приводит к сокращению потребление корма [5,7], что приводит к снижению привеса у крупной радужной форели [30].

В момент первого нереста (двухлетние самки) десять самок после каждого диетического лечения были умерщвлены передозировкой бензокаина, взвешены и измерены. Яйца, печень, пищеварительный тракт (кишечник с перивисцеральной жировой тканью) и тушки (целая потрошенная рыба) собирали у каждой самки и взвешивали. Взвешивали три пула по 50 яйцеклеток от каждой самки и рассчитывали средний вес (мг) одной яйцеклетки. Абсолютную плодовитость измеряли как количество яйцеклеток на самку, а гонадосоматический индекс (GSI) рассчитывали как: (масса гонад / общая масса тела самки) x 100.

Выращивание оставшейся рыбы продолжалось двумя диетическими режимами (C ₂ и V) до следующего воспроизводства (трехлетние самки), когда образцы яйцеклеток отбирались по тому же протоколу, что и для первого.

При каждом нересте примерно 400 собранных яйцеклеток на самку оплодотворяли пулом сперматозоидов, собранных у самцов, получавших коммерческую диету, и измеряли выживаемость потомства на стадии глазков, при вылуплении и на стадии всплытия мальков. (до 1 ^{-го кормления} ).

Все собранные ткани, яйцеклетки и отобранные образцы мальков хранили при -80 ° C до анализа.

Анализ липидов и жирных кислот

Общее содержание липидов в тканях самок, яйцеклеток и плавающих мальков определяли гравиметрически после экстракции смесью дихлорметан / метанол (2: 1, об. / Об.), Содержащей 0,01% бутилированного гидрокситолуола (BHT) в качестве антиоксиданта, согласно Folch et al. al . [31]. Нейтральные (NL) и полярные липидные (PL) фракции разделяли на картриджах с диоксидом кремния (Sep-Pak, Waters, Ирландия) согласно Хуанеде и Рокелину [32].

Метиловые эфиры жирных кислот (FAME) получали трансметилированием, катализируемым кислотой, с использованием трифторида бора согласно Shantha & Ackman [33]. Затем FAME анализировали на газовом хроматографе Varian 3900, оборудованном капиллярной колонкой DB Wax с плавленым кремнеземом (внутренний диаметр 30 м x 0,25 мм, толщина пленки 0,25 мкм; JW Alltech, Франция). Объем впрыска составлял 1 мкл с использованием гелия в качестве газа-носителя (1 мл / мин). Температуры инжектора и пламенно-ионизационного детектора составляли 260 ° C и 250 ° C соответственно.Температурный градиент был следующим: 100–180 ° C при 8 ° C / мин, 180–220 ° C при 4 ° C / мин и постоянная температура 220 ° C в течение 20 минут. Жирные кислоты идентифицировали со ссылкой на известную стандартную смесь (Sigma, Сент-Луис, Миссури, США), и пики объединяли с использованием программного обеспечения Varian Star Chromatography Software (Star Software, версия 5). Результаты для отдельных ЖК были выражены в процентах от общего количества идентифицированных метиловых эфиров ЖК и в количествах (г / 100 г ткани) для ARA, EPA и DHA.

Статистический анализ

Данные были проанализированы статистически с использованием программного обеспечения R версии 2.14.0 и пакет Rcmdr. Нормальность распределения и однородность дисперсии переменных проверяли с помощью теста Шапиро-Уилка и Левена, соответственно. Когда оба условия были удовлетворены, был проведен независимый выборочный t-тест для оценки эффектов диетического лечения; переменные с непараметрическим распределением были либо нормализованы с помощью преобразования арксина, либо, если критерии все еще не соблюдались (некоторые жирные кислоты), для анализа использовался непараметрический тест (парный критерий Вилкоксона).

Результаты

Биометрические параметры и репродуктивная способность

Биометрические параметры (табл. 3) рыб обеих групп измерены на нересте 2-го и 3-го года. На 2-м году нереста масса тела самок, получавших V-диету, была выше (+ 18%), чем у самок, получавших C-диету, что указывает на то, что ограничение пищи, подаваемой в группу, получавшую C, могло быть слишком строгим. , но на 3-м году нереста такой значимой разницы обнаружено не было. Длина тела самок была одинаковой на обоих нерестах независимо от режима питания.Что касается репродуктивных параметров (Таблица 3), общий вес нереста самок, получавших как C, так и V, увеличился на 3-м году нереста по сравнению с 2-м годом. При первом нересте абсолютная плодовитость (яйцеклетка / самка) у самок, получавших V-образный корм, была выше (+ 17%), чем у самок, получавших C. Абсолютная плодовитость была выше на 3-м году нереста, чем на 2-м году, как для самок, получавших C, так и для V-откорма, и в это время не было обнаружено значительной разницы между двумя группами. Средний вес яйцеклетки у рыб, получавших V-образный корм, на обоих нерестах был значительно ниже (год-2: -17%, год-3: -12%).Одна самка из рыб, получавших V-диету, не произвела жизнеспособных яйцеклеток на 2-м году нереста. Гонадосоматический индекс у самок, получавших V-образный корм, был значительно ниже, чем у самок, получавших C, на обоих нерестах (-19% нереста на втором году жизни; -28,8% на третьем году нереста). На 2-м году нереста у обеих групп наблюдался более низкий гонадосоматический индекс по сравнению с 3-м годом.

Показатели выживаемости потомства (таблица 3) оценивались как процент оплодотворенных яйцеклеток, которые достигли стадии глазков, а затем смогли вылупиться и развиться в плавающих мальков.Выживаемость потомства от первого нереста самок, получавших V-образный корм, была ниже, чем для потомства маточного стада, получавшего С-диету, и наблюдалась широкая межличностная изменчивость для группы, получавшей V-образный корм (рис. 1). Однако на 3-м году нереста не было обнаружено столь значительных вызванных диетой различий между алевинами из двух экспериментальных групп (Таблица 3).

Липидный состав ткани

Рыбы, получавшие V-диету, показали значительно более низкое содержание липидов в печени (-38%), в то время как более высокое содержание липидов было обнаружено в пищеварительном тракте (+ 51%) и туше (+ 44%) (рис.2). Содержание липидов в туше и пищеварительном тракте в основном состояло из нейтральных липидов (NL) для групп, получавших как V-, так и C (> 90% и> 88%, соответственно). Однако содержание липидов в печени в основном состоит из полярных липидов (PL) у самок, получавших как V-, так и C (65% и 55%, соответственно).

Рис. 2. Общее содержание липидов в тканях самок, яйцеклеток и плавающих мальков.

Данные представлены как среднее ± стандартное отклонение. p-значения были получены с помощью t-критерия независимой выборки. Разные буквы указывают на существенные различия ( p-значение <0.05).

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0117609.g002

У яйцеклеток от 2-го и 3-го нереста (рис. 2) существенных различий в общем содержании липидов не наблюдалось (11%). или в пропорциях NL и PL, которые составляли 62–65% и 38–35%, соответственно, для обеих женских диет.

Точно так же не было обнаружено никаких существенных различий в отношении общего содержания липидов (5%, т.е. ниже, чем в яйцеклетках), а также нейтральных или полярных липидных фракций (68–69% и 31–32%, соответственно) у плавающих мальков из любой обработки. группа (рис.2).

Профиль жирных кислот

NL и PL тканей, взятых у половозрелых самок, яйцеклеток от 2-го и 3-го года нереста, а также у оленей анализировали на состав жирных кислот. Пропорции ЖК всех проанализированных тканей представлены в Таблице 4 и Таблице 5. Значительный эффект диетического лечения наблюдался для всех проанализированных жирных кислот.

Насыщенные жирные кислоты (SAT) в основном присутствовали во фракции PL во всех тканях матери, а также в яйцеклетках и плавающих мальках, с более низкими значениями для группы V-кормления (таблицы 4 и 5).У яйцеклеток 2-го года нереста и плавающих мальков не было обнаружено значительных различий во фракции PL с точки зрения содержания SAT (таблица 5), тогда как процентное содержание SAT фракции NL было ниже в группе V-кормления, чем в группе, получавшей C (-24% и -21% в яйцеклетках и плавающих мальках, соответственно), а также во всех других проанализированных тканях (таблица 4).

Что касается содержания мононенасыщенных жирных кислот (МНЖК), кормление V-диетой привело к более высокому процентному содержанию этих ЖК во всех проанализированных тканях (+ 40%), в яйцеклетках (+ 31–38%) и молоди в плавании (+ 34%) как во фракции PL, так и во фракции NL, с более выраженным эффектом во фракции NL.МНЖК были наиболее распространенным классом ЖК во фракции NL всех материнских тканей, а также яйцеклеток и плавающих мальков от V-скармливаемых рыб.

Общее количество n-6 ПНЖК было выше в материнских тканях, а также в яйцеклетках и плавающих мальках из группы V-кормления (+ 10–15%). Линолевая кислота (LA, 18: 2 n-6) в основном восстанавливалась во фракции NL во всех проанализированных тканях из групп, получавших как C-, так и V-диету, со значительно более высокими значениями при V-диете. Более высокая доля как n-6 ПНЖК, так и LA была обнаружена в яйцеклетках самок, получавших C, на 3-м году жизни по сравнению с 2-м годом, как во фракциях PL, так и в NL.

ARA в основном присутствовал во фракции PL всех тканей, а также в яйцеклетках и плавающих мальках, независимо от диеты, причем более высокие проценты наблюдались в группе V-корма, за исключением пищеварительного тракта. Более низкий процент ARA был обнаружен во фракции NL всех материнских тканей с V-диетой (Таблица 4). Аналогичное содержание ARA (г / 100 г ткани) было обнаружено в тушах и пищеварительном тракте самок двух групп (Таблица 6), а также в яйцеклетках на 3-м году нереста (Таблица 7). Значительно более высокие (или равные) проценты ARA были обнаружены как в липидных фракциях NL, так и в PL в яйцеклетках и плавающих мальках группы, получавшей V, по сравнению с группой, получавшей C (Таблица 5).

Процент n-3 ПНЖК был выше во фракции PL по сравнению с фракцией NL. Это был наиболее широко представленный класс ЖК в материнских тканях (мышцах, печени), яйцеклетках и плавающих мальках. Более низкие проценты n-3 ПНЖК наблюдались во всех тканях для группы V-кормили (от -5 до -15%). Более высокие пропорции линоленовой кислоты (ALA, 18: 3 n-3) были обнаружены в группе, получавшей V, особенно во фракции NL. Процентное содержание EPA (20: 5 n-3) и DHA (22: 6 n-3) было ниже во всех тканях матери, яйцеклетках и плавающих мальках от самок, получавших V-кормление (таблица 5).Более низкие уровни EPA и DHA (г / 100 г ткани) были обнаружены в пищеварительном тракте, тушах и яйцеклетках самок, получавших V-диету, по сравнению с таковыми у самок, получавших C (Таблица 6 и Таблица 7). У плавающих мальков содержание DHA во фракции PL было в том же диапазоне, независимо от режима питания маточного стада (Таблица 5).

Обсуждение

Результаты этого исследования впервые, насколько нам известно, доказывают, что радужная форель может достичь трехлетнего цикла размножения, включая два нереста, несмотря на то, что ее кормят растительной пищей, полностью свободной от морских ресурсов.Наше исследование было сосредоточено на характеристике диетических эффектов на содержание липидов и профиль жирных кислот в тканях самок, яйцеклеток и потомство в течение двух периодов нереста, поскольку эти параметры, как известно, являются ключевыми детерминантами репродуктивного успеха и выживаемости потомства [17, 19].

Было проведено несколько исследований для изучения возможности использования растительных рационов при выращивании рыб, но очень немногие из них вызывали у рыб рационы, в которых были заменены как FM, так и FO [34].Использование растительных рационов для рыб, выращиваемых в аквакультуре, выявило ограничения, такие как сокращение потребления корма [35–38]. Известно, что сопутствующая замена диетических FM и FO приводит к снижению показателей роста [5,39], что, вероятно, связано с комбинацией более низкого потребления корма и более низкой эффективности корма [5]. Считается, что этот более слабый эффект роста полностью растительной диеты в основном связан с заменой FM, а не с замещением FO у радужной форели [40,41], морского окуня [42] и морского леща [43].Перейра и др. . наблюдали, что замена FM растительными белками уменьшала потребление корма и приводила к ухудшению репродуктивной способности радужной форели [7], но было трудно быть уверенным, что репродуктивная способность была нарушена заменой FM или уменьшенным потреблением корма. В настоящем исследовании мы скорректировали потребление корма в группе С на потребление корма в группе V, чтобы избежать различий в росте и потенциального последующего воздействия на нерест [44]. Хотя при первом нересте это ограничение корма было несколько завышенным, мы достигли нашей цели на нерест на следующий год.

V-диета вызывает отложение липидов в перивисцеральном теле и туше

У костистых рыб накопленный жир обеспечивает энергию в периоды низкой доступности корма и, более конкретно, в периоды особенно высокой потребности в энергии, такие как размножение и смолтификация [17]. В зависимости от вида рыбы способны накапливать жир в разных тканях [45,46], например. печень атлантической трески [38] и перивисцеральная жировая ткань и мясо атлантического лосося и радужной форели [5,38]. В настоящем исследовании у самок обеих групп было значительно более высокое содержание липидов в пищеварительном тракте (рис.2) чем в тушке и печени. Это согласуется с тем фактом, что перивисцеральная жировая ткань является основным местом хранения липидов у радужной форели [47], в то время как печень не выполняет функцию хранилища жира, несмотря на ее важную роль в метаболизме ЖК [48].

Содержание липидов в пищеварительном тракте было значительно выше у форели, получавшей V-диету, чем у тех, кто получал C-диету, в основном из-за фракции NL. Этот результат подтвердил результаты предыдущих исследований питания, проведенных на лососевых [5,38], что указывает на то, что употребление 100% растительной диеты приводит к большему отложению липидов в перивисцеральном жире.Предыдущие исследования также показали, что пищевые липиды матери и липиды жировой ткани, мобилизованные во время превителлогенного и вителлогенного развития, транспортируются к ооцитам через систему кровообращения [27,49,50]. Интересно, что в настоящем исследовании общее содержание липидов в яйцеклетках было одинаковым в обеих диетических группах (11%) на обоих нерестах, и, кроме того, не было обнаружено значительной разницы в содержании липидов между плавающими мальками (5%), происходящими из двух диетические процедуры. Уменьшение общего содержания липидов (с 11% в яйцеклетках до 5% у плавающих мальков) связано с тем, что до экзогенного питания эмбрион утилизирует питательные вещества, полученные из яйцеклетки, в том числе липиды [51].В заключение следует отметить, что содержание жира в яйцах и мальках не было связано с накопленным материнским телом.

V-диета влияет на профиль ЖК в материнских тканях, яйцеклетках и потомстве

Одной из основных проблем одновременного замещения ФМ и ФО растительными источниками в кормах для рыб является изменение профиля жирных кислот (ЖК), что приводит к снижению n-3 ПНЖК в организме рыб [52–54]. Действительно, растительные масла не содержат EPA и DHA, и известно, что профиль ЖК в тканях рыбы отражает состав ЖК в рационе [36,38].Наши результаты соответствовали этим предыдущим выводам; мы наблюдали более высокие концентрации MUFA, линоленовой кислоты и n-6 PUFA во фракциях NL и PL всех исследованных тканей материнских рыб, что отражает их изобилие в V-диете. В частности, кормление рыб последней диетой привело к аналогичным или даже более высоким концентрациям ARA во фракции PL материнских тканей, хотя потребление ARA с пищей было нулевым. При подсчете количества ARA (г ARA / 100 г ткани) мы обнаружили более высокие (или равные) значения для группы, получавшей V-образное кормление, в тушах, пищеварительном тракте и яйцах от обоих нерестов.Эти результаты можно объяснить более высокой долей n-6 ПНЖК в V-диете (22%) по сравнению с C-диетой (8% и 10%), в основном из-за высокого содержания линолевой кислоты, предшественника ARA. С другой стороны, уровни EPA и DHA, характерного компонента диетического FO, были ниже во всех тканях рыб, получавших V-диету, как и концентрации насыщенных ЖК. Таким образом, биоконверсия 18: 2 n-6 в ARA в группе V-кормили выше, чем биоконверсия 18: 3 n-3 в EPA и DHA.Однако измеримые концентрации как EPA, так и DHA были обнаружены во фракциях NL и PL всех материнских тканей форели, выращенной на V-диете, лишенной этих ЖК. В нескольких предыдущих исследованиях сообщалось, что синтез n-3 LC-PUFA, таких как EPA и DHA, измеряемый по десатурации и удлинению линоленовой кислоты 18: 3n-3, был повышен в рационах, получавших лососевых, в которых диетические FO были заменены на растительные масла [55–57], хотя замена FO растительными маслами привела к снижению уровней EPA независимо от вида [36].Настоящее исследование является первым, в котором радужную форель кормили на протяжении всего жизненного цикла (3 года) без приема с пищей EPA и DHA (одновременная замена FM и FO). Тот факт, что были обнаружены незначительные количества этих двух ЖК, показал, что самки радужной форели способны синтезировать EPA и DHA из пищевой линоленовой кислоты и накапливать эти две жирные кислоты как в NL (резервной), так и в PL (мембранной) фракциях. Однако содержание EPA и DHA в тканях, яйцах и плавающих мальках было значительно ниже у форели, получавшей V-образный корм, чем у тех, кто получал C-диету (таблицы 4 и 5), что означает, что биосинтеза EPA и DHA было недостаточно. преодолеть полное отсутствие этих двух ЖК в рационе.

Степень модификации состава ЖК в результате замены FO в рационе значительно различалась между участками хранения липидов (жировая ткань, мышцы) и другими тканями. Независимо от диеты, EPA и DHA в основном сохранялись во фракции PL всех материнских тканей, что подтверждает избирательное удержание n-3 PUFA, особенно DHA, в мембранах [58,59].

Известно, что питание маточного стада играет важную роль в качестве яиц и личинок, а липидный и жирнокислотный состав, в частности, был определен как главный фактор, определяющий успешное воспроизводство и выживаемость потомства [60].Более того, липиды, полученные непосредственно из рациона маточного стада в период, предшествующий гонадогенезу, определяют незаменимые жирные кислоты, жизненно важные для раннего выживания и развития только что вылупившегося потомства [27].

Что касается n-6 ПНЖК в яйцеклетках, более высокие или равные концентрации ARA были обнаружены во фракциях NL и PL яйцеклеток и алевинов из форели, получавшей V и C, что позволяет предположить, что неосинтезированная ARA из 18: 2 Предшественник n-6 (LA) хранится в яйцеклетках. Это важно, поскольку ARA играет важную роль в репродуктивном процессе [13,61].Более того, ARA считается основным предшественником эйкозаноидов у рыб [62], а эйкозаноиды играют важную роль в овуляции и, вероятно, участвуют в эмбриогенезе, вылуплении и раннем развитии личинок [63,64].

Наше исследование также выявило повышенный процент n-3 LC-PUFA, EPA и DHA в яйцеклетках по сравнению с материнскими тканями у рыб, получавших как C, так и V, что свидетельствует об активном материнском переносе этих неосинтезированных ЖК от линоленовой кислоты в яйцеклетки. Количество EPA и DHA, обнаруженных на 100 г ткани, убедительно свидетельствует о преимущественной мобилизации перивисцеральных липидных резервов, а не туши.Как упоминалось выше, у самок, получавших V-диету, увеличивалось перивисцеральное накопление жира, так что было доступно достаточное количество запасов для вителлогенного процесса. Количества EPA и DHA, обнаруженные в яйцеклетках, подтверждают преимущественное включение этих ЖК в яйцеклетки.

EPA и DHA хранились в запасах (фракция NL) в яйцеклетках и плавающих мальках в дополнение к мембранам (фракция PL), которые являются основными местами отложения. Повышенные уровни EPA и DHA ранее были описаны в икринках рыб [60,61], что подтверждает важную роль, которую DHA играет в яйцах и последующем развитии потомства.n-3 ПНЖК хранятся в резервах для потенциального использования во время развития [17] или катаболизируются для получения энергии после вылупления [65]. Например, DHA в основном включается в богатый фосфолипидами вителлогенин, который синтезируется в печени, а затем переносится через сыворотку в развивающиеся яйцеклетки [27]. Накопление DHA во фракции PL яйцеклеток играет важную биологическую роль в качестве структурных фосфолипидов [27], обеспечивающих текучесть клеточных мембран. Наши результаты также показали большее увеличение содержания DHA от яйцеклеток к алевинам для обеих групп.Это указывает на то, что алевины радужной форели способны избирательно удерживать DHA, в основном в полярной липидной фракции.

Измерения абсолютной плодовитости показывают, что V-диета не уменьшает количество продуцируемых яйцеклеток, хотя яйцеклетки от самок, получавших V-образное вскармливание, были меньше. Более того, что касается развития потомства, кормление V-диетой привело к значительному снижению (> 22%) выживаемости на всех стадиях первого нереста (год-2), подтверждая предыдущие исследования [26,66]. Интересно, что такой значимой разницы в выживаемости не наблюдалось у алевинов, развившихся из яиц после 3-летнего нереста.Хорошо известно, что маточное стадо большего размера дает большее количество яиц, а также яйца большего размера [67]. В нашем исследовании, сравнивая два периода нереста, мы наблюдали увеличение веса самок во время второго нереста и сопутствующее увеличение веса яйцеклеток для обеих групп самок. Более низкая репродуктивная способность, наблюдаемая у группы, получавшей V-образный корм при первом нересте, возможно, связана с меньшим размером яиц по сравнению с яйцами от самок, получавших С-диету. Действительно, на 3-м году нереста самки, получавшие V-образный корм, давали яйцеклетки с массой, сравнимой с весом яйцеклеток, полученных от самок, получавших C, при первом нересте.Мы также изначально предположили, что дифференциальное накопление общих липидов или специфические изменения в профиле FA яйцеклеток могут быть ответственны за различия в выживаемости, наблюдаемые между двумя нерестиками самок, получавших V-кормление. В этой группе яйцеклетки, рожденные 3-летними самками, имели более высокое содержание ARA (1,3 против 0,8 г / 100 г яйцеклеток) и EPA (2,1 против 1,6 г / 100 г яйцеклеток), чем яйца, рожденные 2-летними самками. . Учитывая важность этих ЖК для репродуктивной функции [68,69], более высокая выживаемость, наблюдаемая у потомства, развивающегося от яйцеклеток, созданных трехлетними самками, может быть связана с более высоким содержанием ARA и EPA в яйцеклетках.Тем не менее, мы также обнаружили более низкое содержание DHA в яйцеклетках самок, получавших V-образное вскармливание, на 3-м году нереста по сравнению с нерестом на 2-й год. Принимая во внимание решающую роль DHA в репродукции и развитии эмбриона [60], кажется, что более высокая выживаемость, наблюдаемая у потомков от самок с V-образным вскармливанием на 3-м году нереста, в большей степени связана с размером яиц и запасами энергии, чем с различия в профиле FA яйцеклеток.

В заключение, форель, выращенная на растительной диете, полностью лишенная длинноцепочечных ПНЖК на протяжении всего жизненного цикла (3 года), могла давать жизнеспособные яйцеклетки и потомство.Вероятно, это было связано с тем фактом, что самки радужной форели были замечательно способны синтезировать ARA, EPA и DHA из пищевых прекурсоров. Эти вновь синтезированные LC-PUFA преимущественно включались в яйцеклетки, которые у рыб представляют собой основные источники питательных веществ, используемых эмбрионом до экзогенного питания [51]. Тем не менее, необходимы дальнейшие корректировки формулы корма для оптимизации репродуктивной функции, особенно при первом нересте.

Благодарности

Благодарим П.Маунас и Н. Туронне из экспериментальных предприятий INRA в Ле-Атасе (Атлантические Пиренеи, Франция) и Л. Лаббе и Т. Керней из предприятий INRA PEIMA по выращиванию рыбы, а также Ф. Сандрес и Ф. Терьер за производство экспериментального рациона (INRA, Донзак, Франция). Благодарим Л. Ларроке за техническую помощь.

Вклад авторов

Задумал и спроектировал эксперименты: FM MDN EQ. Проведены эксперименты: VL AL FM GC MDN EQ. Проанализированы данные: ВЛ АЛ ГК ФМ. Написал статью: VL GC FM.

Ссылки

1. 1. Споден К., Ниренберг Д. (2013) Аквакультура пытается удовлетворить неутолимый аппетит мира к морепродуктам. Жизненно важные признаки: Springer. С. 57–61.
2. 2. ФАО (2011) Департамент аквакультуры. 2013. Глобальная статистика производства аквакультуры за год.
3. 3. ФАО (2009 г.) Состояние мирового рыболовства и аквакультуры: 2008 г.
4. 4. Гатлин Д.М., Барроуз Ф.Т., Браун П., Дабровски К., Гейлорд Т.Г. и др. (2007) Расширение использования устойчивых растительных продуктов в аквакормах: обзор.Исследования аквакультуры 38: 551–579.
5. 5. Panserat S, Hortopan G, Plagnes-Juan E, Kolditz C, Lansard M и др. (2009) Дифференциальная экспрессия генов после полной замены диетической рыбной муки и рыбьего жира растительными продуктами в печени радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Аквакультура 294: 123–131.
6. 6. Де Франческо М., Паризи Дж., Перес-Санчес Дж., Гомес-Рекени П., Медале Ф. и др. (2007) Влияние замены рыбной муки на высоком уровне растительными белками у морского леща (Sparus aurata) на рост и качество тела / филе.Питание аквакультуры 13: 361–372.
7. 7. Перейра Дж., Рейс-Энрикес М.А., Санчес Дж., Коста Дж. (1998) Влияние источника белка на репродуктивную способность самок радужной форели, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Исследования аквакультуры 29: 751–760.
8. 8. Enes P, Panserat S, Kaushik S, Oliva-Teles A (2011) Использование углеводов в рационе европейского морского окуня ( Dicentrarchus labrax L .) И дорада ( Sparus aurata L .) молодняк. Обзоры в Fisheries Science 19: 201–215.
9. 9. Francis G, Makkar HP, Becker K (2001) Факторы, препятствующие питанию, присутствующие в растительных ингредиентах альтернативных кормов для рыб, и их влияние на рыбу. Аквакультура 199: 197–227.
10. 10. Bell JG, McGhee F, Campbell PJ, Sargent JR (2003) Рапсовое масло как альтернатива морскому рыбьему жиру в рационах атлантического лосося после смолта ( Salmo salar ): изменения в составе жирных кислот мяса и эффективность последующего рыбьего жира «Промыть».Аквакультура 218: 515–528.
11. 11. Ричард Н., Каушик С., Ларрокет Л., Пансерат С., Корраз Г. (2006) Замена диетического рыбьего жира растительными маслами мало влияет на липогенез, транспорт липидов и поглощение липидов тканями радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Британский журнал питания 96: 299–309. pmid: 16923224
12. 12. Розенлунд Г., Корразе Г., Искьердо М., Торстенсен Б. Е. (2011) Влияние замены рыбьего жира на питательные и органолептические качества выращиваемой рыбы.В: Turchini GM, Ng WK, Tocher DR, редакторы. Замена рыбьего жира и альтернативные источники липидов в кормах для аквакультуры. Бока-Ратон: CRC Press, Тейлор и Фрэнсис. С. 487–522.
13. 13. Salze G, Tocher DR, Roy WJ, Robertson DA (2005) Детерминанты качества яиц трески ( Gadus morhua L .): Яйценоскость и липиды в яйцах выращиваемых и диких производителей. Исследования аквакультуры 36: 1488–1499.
14. 14. Сарджент Дж., Макэвой Л., Эстевес А., Белл Дж., Белл М. и др.(1999) Липидное питание морских рыб на раннем этапе развития: текущее состояние и будущие направления. Аквакультура 179: 217–229.
15. 15. Manor ML, Weber GM, Cleveland BM, Kenney PB (2014) Влияние уровня кормления и полового созревания на жирнокислотный состав запасов энергии у диплоидной и триплоидной радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Аквакультура 418: 17–25.
16. 16. Nassour I, Léger CL (1989) Отложение и мобилизация жировых отложений во время полового созревания у самок форели ( Salmo gairdneri, Richardson).Водные живые ресурсы 2: 153–159.
17. 17. Tocher DR (2003) Метаболизм и функции липидов и жирных кислот костистых рыб. Обзоры в Fisheries Science 11: 107–184.
18. 18. Manor ML, Weber GM, Salem M, Yao J, Aussanasuwannakul A, et al. (2012) Влияние полового созревания и триплоидии на химический состав и содержание жирных кислот в запасах энергии у самок радужной форели, Oncorhynchus mykiss . Аквакультура 364: 312–321.
19. 19.Бромейдж Н.Р., Робертс Р.Дж. (1995) Управление маточным стадом и качество яиц и личинок. Оксфорд (Великобритания): Blackwell Science Ltd. 424 с. pmid: 25144093
20. 20. Cerdá J, Zanuy S, Carrillo M, Ramos J, Serrano R (1995) Краткосрочные и долгосрочные диетические эффекты на самок морского окуня Dicentrarchus labrax : сезонные изменения в плазменных профилях липидов и половых стероидов в зависимости от воспроизводства. Сравнительная биохимия и физиология Часть C: Фармакология, токсикология и эндокринология 111: 83–91.
21. 21. Abi-Ayad A, Mélard C, Kestemont P (1997) Влияние жирных кислот n-3 в рационе маточного стада евразийского окуня на состав жирных кислот яиц и стрессоустойчивость личинок. Международная ассоциация аквакультуры 5.
22. 22. Навас Дж., Брюс М., Траш М., Фарндейл Б., Бромаж Н. и др. (1997) Влияние сезонных изменений липидного состава рациона маточного стада на качество яиц европейского морского окуня. Журнал биологии рыб 51: 760–773.
23. 23. Takeuchi T (1997) Потребность водных животных в основных жирных кислотах с акцентом на личинки и молодь рыб.Обзоры в Fisheries Science 5: 1–25.
24. 24. Родригес К., Сехас Дж., Мартин М., Бадиа П., Сампер М. и др. (1998) Влияние дефицита n-3 высоконенасыщенных жирных кислот на липидный состав маточного стада морского леща ( Sparus aurata L .) И на качество яиц. Физиология и биохимия рыб 18: 177–187.
25. 25. Harel M, Tandler A, Kissil GW, Applebaum SW (1994) Кинетика включения питательных веществ в ткани тела самок морского леща ( Sparus aurata ) и последующее влияние на состав яиц и качество яиц.Британский журнал питания 72: 45–58. pmid: 7918328
26. 26. Leray C, Nonnotte G, Roubaud P, Leger C (1985) Частота (n-3) дефицита незаменимых жирных кислот в репродуктивных процессах форели. Размножение, питание, развитие 25: 567. pmid: 4023399
27. 27. Сарджент Дж. (1995) Происхождение и функции яичных липидов: последствия для питания. В: Bromage NR, Roberts RJ, редакторы. Содержание маточного стада и качество яиц и личинок. Оксфорд (Великобритания): Blackwell Science Ltd.С. 353–372.
28. 28. Turchini GM, Francis DS (2009) Метаболизм жирных кислот (десатурация, удлинение и β-окисление) в рационах на основе рыбьего жира или льняного масла радужной форели. Британский журнал питания 102: 69–81. pmid: 1
59
29. 29. Хамре К., Юфера М., Рённестад И., Боглионе С., Консейсао Л.Э. и др. (2013) Питание личинок рыб и состав кормов: пробелы в знаниях и узкие места для достижений в выращивании личинок. Обзоры в аквакультуре 5: S26 – S58.
30. 30.Де Франческо М., Паризи Дж., Медале Ф., Лупи П., Каушик С.Дж. и др. (2004) Влияние длительного кормления диетой на основе смеси растительных белков на рост и качество тела / филе большой радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Аквакультура 236: 413–429.
31. 31. Folch J, Lees M, Sloane-Stanley G (1957) Простой метод выделения и очистки общих липидов из тканей животных. J Biol Chem 226: 497-509. pmid: 13428781
32. 32. Juaneda P, Rocquelin G (1985) Быстрое и удобное отделение фосфолипидов и нефосфорных липидов от сердца крысы с использованием картриджей с диоксидом кремния.Липиды 20: 40–41. pmid: 2982073
33. 33. Shantha N, Ackman R (1990) Нервоновая кислота по сравнению с трикозановой кислотой в качестве внутренних стандартов в количественных газохроматографических анализах метиловых эфиров n-3 полиненасыщенных жирных кислот с длинной цепью рыбьего жира. J Chromatogr B: Biomed Sci Appl 533: 1–10.
34. 34. Ле Буше Р., Квилле Э., Вандепутте М., Лекальвез Дж. М., Гоардон Л. и др. (2011) Растительный рацион радужной форели ( Oncorhynchus mykiss Walbaum): существуют ли взаимосвязи между генотипом и диетой по основным продуктивным признакам, когда рыбу скармливают морской пищей или растительной диетой с первого приема пищи? Аквакультура 321: 41–48.
35. 35. Лим C, Webster CD, Lee C-S (2008) Альтернативные источники белка в рационах аквакультуры. Нью-Йорк (США): The Haworth Press pmid: 25506952
36. 36. Turchini GM, Torstensen BE, Ng WK (2009) Замена рыбьего жира в питании рыб. Обзоры в аквакультуре 1: 10–57.
37. 37. Médale F, Kaushik S (2009) Источники белка в кормах для выращиваемой рыбы. Cahiers Agricultures 18 103–111.
38. 38. Corraze G, Kaushik S (2009) Липидное питание и замена рыбьего жира растительными маслами в рыбоводстве.Cahiers Agricultures 18: 112–118.
39. 39. Drew MD, Ogunkoya AE, Janz DM, Van Kessel AG (2007) Диетическое влияние замены рыбной муки и жира концентратом белка канолы и растительными маслами на показатели роста, состав жирных кислот и хлорорганические остатки у радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ). Аквакультура 267: 260–268.
40. 40. Каушик С., Краведи Дж., Лаллес Дж., Самптер Дж., Фауконо Б. и др. (1995) Частичная или полная замена рыбной муки соевым белком на рост, использование белка, потенциальные эстрогенные или антигенные эффекты, холестеринемию и качество мяса у радужной форели, Oncorhynchus mykiss .Аквакультура 133: 257–274.
41. 41. Пансерат С., Колдиц С., Ричард Н., Планьес-Хуан Э., Пиуми Ф. и др. (2008) Профили экспрессии генов печени у молоди радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ), получавшей рыбную муку или рацион без рыбьего жира. Британский журнал питания 100: 953–967. pmid: 18439330
42. 42. Kaushik S, Coves D, Dutto G, Blanc D (2004) Практически полная замена рыбной муки источниками растительного белка в рационе морского костистого окуня, европейского морского окуня, Dicentrarchus labrax .Аквакультура 230: 391–404.
43. 43. Гомес-Рекени П., Мингарро М., Калдуч-Гинер Дж., Медале Ф., Мартин С. и др. (2004) Показатели роста белка, утилизация аминокислот и реакция соматотропной оси на замену рыбной муки растительными источниками белка у морского леща ( Sparus aurata ). Аквакультура 232: 493–510.
44. 44. Бромедж Н., Джонс Дж., Рэндалл С., Траш М., Дэвис Б. и др. (1992) Управление маточным стадом, плодовитость, качество яиц и сроки яйценоскости радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ).Аквакультура 100: 141–166.
45. 45. Hardy RW, Scott TM, Harrell LW (1987) Замена сельдевого масла на масло менхадена, соевое масло или жир в рационах атлантического лосося, выращиваемого в морских загонах. Аквакультура 65: 267–277.
46. 46. Сарджент Дж., Тохер Д., Белл Дж. (2002) Липиды. В: Халвер Дж., Харди Р., редакторы. Питание рыб. Лондон (Великобритания): Academic Press. С. 181–257. https://doi.org/10.1054/nepr.2002.0062 pmid: 1
47. 96
48. 47. Corraze G, Kaushik S (1999) Les lipides des poissons marins et d’eau douce.Oléagineux, Corps Gras, Lipides 6: 111–115. pmid: 25601692
49. 48. Peragén J, Barroso JB, García-Salguero L, de la Higuera M, Lupiáñez JA (2000) Диетические изменения в белке, углеводах и жирах увеличивают скорость оборота белка в печени и снижают общую скорость роста радужной форели ( Oncorhynchus mykiss ) . Молекулярная и клеточная биохимия 209: 97–104. pmid: 10942206
50. 49. Тайлер С., Самптер Дж. (1996) Рост и развитие ооцитов костистых рыб.Обзоры в журнале Fish Biology and Fisheries 6: 287–318.
51. 50. Патиньо Р., Салливан К.В. (2002) Рост, созревание и овуляция фолликулов яичников у костистых рыб. Физиология и биохимия рыб 26: 57–70.
52. 51. Brooks S, Tyler CR, Sumpter JP (1997) Качество яиц в рыбе: что делает хорошее яйцо? Обзоры в журнале Fish Biology and Fisheries 7: 387–416.
53. 52. Бенедито-Палос Л., Наварро Дж. К., Ситжа-Бобадилла А., Гордон Белл Дж., Каушик С. и др. (2008) Высокие уровни растительных масел в рационах, богатых растительным белком, при кормлении морского леща ( Sparus aurata L.): показатели роста, профили жирных кислот в мышцах и гистологические изменения тканей-мишеней. Британский журнал питания 100: 992–1003. pmid: 18377678
54. 53. Torstensen BE, Espe M, Stubhaug I, Lie Ø (2011) Диетические растительные белки и смеси растительных масел увеличивают ожирение и липиды плазмы у атлантического лосося ( Salmo salar L.). Британский журнал питания 106: 633–647. pmid: 21535902
55. 54. Матос Э., Гонсалвес А., Бандарра Н., Колен Р., Нунес М.Л. и др.(2012) Растительные белки и растительное масло не оказывают пагубного воздействия на инструментальную структуру посмертных мышц, сенсорные свойства и пищевую ценность морского леща. Аквакультура 358: 205–212.
56. 55. Tocher DR, Bell JG, Dick JR, Sargent JR (1997) Десатурация жирных ацилов в изолированных гепатоцитах атлантического лосося ( Salmo salar ): стимуляция диетическим маслом бурачника, содержащим γ-линоленовую кислоту. Липиды 32: 1237–1247. pmid: 9438233
57. 56. Точер Д.Р., Белл Дж. Г., Дик Дж. Р., Хендерсон Р. Дж., МакГи Ф. и др.(2000) Метаболизм полиненасыщенных жирных кислот у атлантического лосося ( Salmo salar ), претерпевающих трансформацию парра-смолта, и влияние диетического льняного и рапсового масел. Физиология и биохимия рыб 23: 59–73.
58. 57. Tocher DR, Bell JG, MacGlaughlin P, McGhee F, Dick JR (2001) Десатурация жирных кислот гепатоцитов и состав полиненасыщенных жирных кислот печени у лососевых: эффекты диетического растительного масла. Сравнительная биохимия и физиология Часть B: Биохимия и молекулярная биология 130: 257–270.pmid: 11544096
59. 58. Искьердо М. (1996) Потребность в незаменимых жирных кислотах культивируемых личинок морских рыб. Питание аквакультуры 2: 183–191.
60. 59. Nassour I (1988) Depot et mobilization des lipides corporels au cours du cycle sexuel chez la truite arc-en-ciel: effets d’une carence en acides gras essentiels sur la композиция en acides gras des different fabric [докторская диссертация]: Парижский университет Дидро-Париж VII.
61. 60. Искьердо М., Фернандес-Паласиос Х., Такон А. (2001) Влияние питания маточного стада на репродуктивную способность рыб.Аквакультура 197: 25–42.
62. 61. Точер Д. Р., Сарджент Дж. Р. (1984) Анализ липидов и жирных кислот в спелой икре некоторых морских рыб северо-западной Европы. Липиды 19: 492–499. pmid: 21344278
63. 62. Bell JG, Tocher DR, Sargent JR (1994) Влияние добавки с 20: 3 (n — 6), 20: 4 (n — 6) и 20: 5 (n — 3) на производство простагландинов E и F 1-, 2- и 3-серии в тюрбо ( Scophthalmus maximus ) астроглиальных клеток головного мозга в первичной культуре.Biochimica и Biophysica Acta — липиды и липидный метаболизм 1211: 335–342.
64. 63. Мустафа Т., Шривастава К. (1989) Простагландины (эйкозаноиды) и их роль в экзотермических организмах. Достижения в сравнительной физиологии и физиологии окружающей среды: Springer. С. 157–207.
65. 64. Фуруита Х., Танака Х., Ямамото Т., Судзуки Н., Такеучи Т. (2002) Влияние высоких уровней n- 3 HUFA в рационе маточного стада на качество яиц и состав жирных кислот яиц японской камбалы, Paralichthys olivaceus .Аквакультура 210: 323–333.
66. 65. Rønnestad I, Koven W, Tandler A, Harel M, Fyhn HJ (1998) Использование желтка в качестве топлива для развития яиц и личинок морского окуня ( Dicentrarchus labrax ). Аквакультура 162: 157–170.
67. 66. Watanabe T (1985) Важность изучения питания маточного стада для дальнейшего развития аквакультуры. В: Cowey CB, Mackie AM, Bell JG, редакторы. Питание и кормление рыб. Лондон (Великобритания): Academic Press. С. 395–414.
68. 67. Сарджент Р.К., Тейлор П.Д., Гросс М.Р. (1987) Забота о родителях и эволюция размера яиц у рыб. Американский натуралист: 32–46.
69. 68. Стёттруп Дж., Якобсен С., Томкевич Дж., Ярлбек Х. (2013) Модификация состава незаменимых жирных кислот в маточном стаде выращиваемого европейского угря Anguilla anguilla L. Aquaculture Nutrition 19: 172–185.
70. 69. Fernández-Palacios H, Izquierdo MS, Robaina L, Valencia A, Salhi M, Vergara J (1995) Влияние уровня n-3 HUFA в рационах маточного стада на качество яиц морского леща дорады ( Sparus aurata L.). Аквакультура 132: 325–337.

Бизнес-рецепт разведения форели

• Описание
• Оборудование
• Материалы
• Объект недвижимости
• Персонал

Форель считается одной из самых дорогих рыб на рынке. Его мясо так высоко ценится из-за того, что для его надлежащего разведения требуется много усилий.

Еще одна прекрасная возможность пополнить управленческий бюджет — это предложить рыбалку за умеренную плату.Эта деятельность способна приносить 5-6% продаж (благодаря этой идее ежегодно можно продавать 30-40 тонн рыбы).

Другой вариант распределения расходов предлагается ниже:
— централизованные закупки — 250 — 300 долларов США;
— заработная плата персонала — 700 долларов США;
— закупка кормов — до 200 долларов США;
— прочие расходы — до 500 долларов США.
Итак, общие расходы колеблются от 1500 до 2000 долларов (для разведения крошечной форели).

Системы рециркуляции аквакультуры более популярны, а значит, и дороже.Чтобы организовать разведение форели с помощью такой системы, вам может потребоваться около 100000 долларов. Но это тоже довольно эффективно и выгодно.

Преимущество применения специальных технологий ко всему процессу — постепенный контроль разведения. В среднем компания, основанная на системном подходе рециркуляционной аквакультуры к выращиванию форели, может производить до 10 тонн форели в год. При средней стоимости 9–10 долларов за кг вы можете рассчитывать на годовой доход в размере 100 000 долларов.

Цена продажи этого бизнеса обычно составляет 4 доллара.5/2 фунта (без НДС).

Его рост определяется двумя основными факторами: температурой воды и насыщением кислородом. Состояние всей биологической системы водоема, уровень кислотности (pH) и многие другие факторы также влияют на здоровье форели.

Оптимальная температура воды для разведения форели 16-19 градусов Цельсия.

Чем крупнее рыба, тем больше она востребована на рынке. Оптимальный вес форели от 1,8 до 2,2 фунта.

Цикл выращивания форели — 2.5 лет. Однако форель можно продать через полтора года, когда она достигнет веса не менее 0,7 фунта.

Подводя итоги, начинать рыбоводный бизнес рискованно, если вы рассчитываете на стабильную прибыль. Лучше начать с организации платной рыбалки.

http://www.thatpetplace.com/aquarium-supplies/aquarium-breeding-refugiums#!aquarium-breeding-refugiums

http://www.kensfish.com/aquarium-supplies/fish-breeding-supplies/ breeding-Supplies.html

Применение интенсивных технологий позволяет получать до 1000 центнеров рыбы с гектара.Чтобы решить эту проблему, свяжитесь с производителями и поставщиками рыбного хозяйства , аквакультурного оборудования и оборудования для аэрации и оксигенации . Вам наверняка понадобится автоматизация производства рыбы для сбыта.

Во-первых, решите, какой запас воды выбрать: пресную или соленую. Затем выберите программу зарыбления пруда, чтобы расширить возможности ловли форели в общественных водах на всей территории штата.

Форелеводство может осуществляться как крупномасштабная операция, требующая значительных капиталовложений и автоматизации для производства рыбы для продажи в ресторанах, супермаркетах, переработчиках рыбы и платных промыслах.Это потребует от фермера тщательного контроля за работой инкубатория и ведения актуальных производственных записей. Огромное производство означает покупку инкубаторов для яиц, аэраторов, нагнетательной системы, воздушного диффузора, генератора, кормушки, резервуара для дезинфицирующего средства, резервуара для транспортировки, инструментов для сортировки и сортировки, весов и грузовиков для доставки.

Основным оборудованием, используемым при выращивании и разведении рыбы, является гравитационный фильтр. Его основное предназначение — фильтровать водоем.

Базовые резервуары, ловушки для разведения, воздушные насосы, сети и другое оборудование могут быть выбраны в зависимости от размера и местоположения предприятия.

Обратите внимание на выбранную вами сортировочную машину. Размер вашей рыбы и качество ее мяса / яиц зависит от класса таких машин. Итак, просмотрите список основного оборудования:

Машина для сортировки яиц — 10 000 — 17 000 долларов США;

Кормовой экструдер — 50 000 — 300 000 долларов США;

Воздушные насосы — менее 10 долларов США;

Водяные насосы — 25 — 200 $;

— около 50 долларов США;

Очистители и сменщики — 40-60 долларов США;

Различные системные контроллеры — 100 — 250 $;

Фильтры — до 100 $.

http://www.inveaquaculture.com/wpcproduct/fish-breed-m-2/

http://www.biokoifutter.com/index.php/en/raw-materials

Основные расходы Форелеводства занимается кормлением рыб. На его долю приходится 50-60% всех затрат. Сырье еще никогда не было таким дорогим. На самом деле фураж не такой уж и дорогой, но его количество может быть огромным. Рекомендуется угощать рыбу высокобелковым питательным кормом, содержание белка в котором не менее 26 — 28%, а жирность должна быть в пределах — 5-7%.Такой способ кормления наиболее эффективен, хотя и дороже обычного (на 20%).

В целом кормление форели — самое сложное: необходимо закупать только качественные немецкие корма. Выбирая дешевый корм, вы получаете белое мясо. Но покупатели привыкли к красному. Просто помните.

Затраты не менее 2 фунтов на корм для вашей рыбы окупятся увеличением веса форели на те же 2 фунта.

Немецкий корм — около 2 долларов за 2 фунта;

Некачественные корма — 0 руб.9 за 2 фунта;

Посадочный материал — 10 долларов за 2 фунта.

В прудах можно выращивать форель двух видов:
— ручьевая форель (грызуны),
— радужная форель.

Если говорить о природных условиях, то в основном форель разводят в реках и озерах. Есть также хозяйства по выращиванию форели в морской воде. Форель нуждается в чистой воде, поэтому для нее лучше всего подходит проточная вода. Если вам не удается достать проточную воду, внимательно следите за ней и меняйте ее, когда почувствуете, что она немного загрязняется.

В любом случае необходимо проконсультироваться со специалистами, чтобы определить, подходит ли выбранный пруд для дальнейшего разведения форели. Может потребоваться строительство люка.

Форель рекомендуется выращивать на глубине не менее четырех метров, так как температура воды на этом уровне никогда не поднимается выше 16 градусов даже в летнюю жару. Многие форелевые пруды устраиваются на холодных текущих ручьях, либо высасывают воду из рек или артезианских колодцев.

Любого пруда площадью 5 га хватит на 10 тонн форели.«Золотое правило» этого бизнеса заключается в том, что чем больше водоем, тем легче в нем разводить рыбу. В большом бассейне температура более ровная, что благоприятно для всех рыб. Желательно приобретать осушаемый водоем: он значительно облегчит процесс отлова в осенний период.

Жизнь форели содержится в специальных клетках из нейлоновой сетки размером три на три метра. Они помещаются в длинную сварную конструкцию.

Вы также можете развести форель в проливе.Затем убедитесь, что его длина превышает 300 метров.

Водоемы естественного происхождения часто выбираются для разведения форели. В их числе:
* пруд кормового типа;
* детский пруд;
* пруд для нереста;
* зимний пруд.

В число «обязательных» сотрудников рыбоводства входят:

охранник;

кормушка для рыбы;

очиститель пруда;

заведующий / собственник.

Вы можете нанять некоторых специалистов позже. Кроме того, вам необходимо разрешение и лицензия на использование местных водных ресурсов.Также желательно разрешение ведения бизнеса в сфере рыболовства.

Заработок ваших сторожей будет всего 1000 долларов в год (на каждого). Им не нужно работать 24 часа в сутки, 7 дней в неделю.

Что касается разрешения и лицензии, не беспокойтесь: они выдаются в соответствии с общими условиями и обработкой водоема, который вы выбрали для своей форели. Все форелевых хозяйств, хозяйств подлежат проверке со стороны государственного персонала , так что имейте в виду.

Часто задаваемые вопросы

BIZONE Recipe — это соответствующий комплект оборудования от поставщиков со всего мира, завернутый в успешную бизнес-модель, подтвержденную успешными предпринимателями.

Нет, бизнес-рецепты абсолютно бесплатны. У вас есть доступ к многочисленным поставщикам и экспертам в вашей отрасли. Вы можете использовать описанную бизнес-модель без каких-либо лицензионных отчислений.

Просто свяжитесь с нами и опишите бизнес, который вы планируете открыть.